|
Влияние IL—3 на регенеративно-индукционную активность гемопоэтических стволовых клеток костного мозга при экспериментальном инфаркте миокарда
|
||||||||||
|
Н.Н. Беляев \ М.Р. Рысулы г, А.С. Исабекова \ ЕА. Северова г, ИМ. Поминова г, ЕА. Енин 3, Ю.В. Перфильева \ ТА. Супниязова \ Р.Т. Тлеупиева \ ЭА. Изахунова \ Е.Н. Середа 3, Г.В. Федотовских 3, Ю.Д. Денисов 2
' Институт молекулярной биологии и биохимии им. МА. Айтхожина ЦБИ МОН РК, Алматы, Казахстан
3 НИИ кардиологии и внутренних болезней МЗ РК, Алматы, Казахстан
3 Национальный научный центр хирургии МЗ РК, Алматы, Казахстан
IL-3 effects on the regenerative inductive activity of bone marrow hematopoietic stem cells in experimental myocardial infarction
N.N. Belyaev \ M.R. Rysuly2, AS. Isabekova \ EA. Severova 2, N.M. Pominova 2, EA. Enin 3, Yu.V. Perfil'eva \ T.A. Supniyazova \ R.T. Tleulieva ', EA. Izakhunova \ E.N. Sereda 2, G.V. Fedotovskikh 3, Yu.D. Denisov2
1 the M.A. Aitkhozhin Institute of Molecular Biology and Biochemistry, Almaty, Kazakhstan
2 the Research Institute of Cardiology and Internal Medicine, Almaty, Kazakhstan
3 the National Scientific Center for Surgery, Almaty, Kazakhstan
|
||||||||||
|
The research was aimed to investigate the effects of stimulating bone marrow hematopoietic stem cells CHSCsJ when culturing ex vivo by cytokines to improve their regenerative properties in an experimental myocardial infarction. White outbread mice of both sexes were used in the experiments. Small-focal myocardial infarction was modeled by intraperitoneal introduction of isoproterenol, a p-adrenoceptor agonist. HSC CD 117+ were isolated from the bone marrow fraction with the buoyant-density of 1,09 g/ ml by employing immunomagnetic separation and cultured for 48 hours in the presence of IL-3. Thereafter the CXCR4 receptor expression and TGFfi production were assessed with an enzyme multiplied immunoassay. IL-3 stimulated hematopoietic stem cells were labeled by a fluorescent dye CCFSEJ and were introduced intravenously into animals with a small-focal myocardial infarction. A post-infarction production of the homing factor SDF-1 within the cardiac muscle, the migration of labeled HSCs into the cardiac tissue and histomorphologic alterations of a regenerative character were evaluated. 11-3 has been stated to enhance reliably the CXCR4 expression and TGFfi production when cultured for three days. At the 7-th day after an administration of isoproterenol there was a tendency towards increasing a production of the homing factor SDF-1 within the cardiac muscle, which disappeared as the myocardial infarction progressed. Isoproterenol-induced localization and the character of alterations within the mouse myocardium morphologically corresponded to a small-focal myocardial infarction. A histomorphologic assay demonstrated processes of reparative modeling of the myocardium and neoangiogenesis to be enhanced in case of introducing stimulated hematopoietic stem cells. The experiments performed indicate that new approaches to reenforce potential regenerative properties of hematopoietic stem cells of bone marrow are promising in the treatment of acute myocardial infarction.
Key words: hematopoietic stem cells, IL-3, myocardial infarction.
хронической сердечной недостаточности [1]. Несмотря на успехи фармакологии в создании эффективных препаратов и развитие хирургических методов лечения, прогнозируется дальнейшее ухудшение ситуации.
Новейший подход к лечению сердечно-сосудистой недостаточности связан с восстановлением клеточной массы сердца с помощью трансплантации стволовых
|
||||||||||
|
Целью исследования явилось изучение влияния гемопоэтических стволовых клеток СГСЮ костного мозга в условиях культивирования ex vivo с цитокинами на их индукционно-реге-неративную способность при экспериментальном инфаркте миокарда. Опыты проводили на беспородных белых крысах обоего пола. Модель мелкоочагового инфаркта миокарда создавали путем внутрибрюшинного введения [i-адреномиметика изопротеренола. CD 117+ ГСК выделяли из фракции костного мозга с плавучей плотностью 1,09 г/мл с помощью иммуно-магнитной сепарации и культивировали 48 ч в присутствии IL-3, после чего исследовали экспрессию рецептора CXCR4 и продукцию TGFfi с помощью иммуноферментного анализа. Стимулированные IL-3 ГСК метили флуоресцентной меткой [CFSEJ и вводили внутривенно животным с мелкоочаговым инфарктом миокарда. Оценивали продукцию фактора хоуминга SDF-1 в сердечной мышце после инфаркта, миграцию меченых ГСК в сердечную ткань и гистоморфологические изменения регенеративного характера. Установлено, что IL-3 достоверно усиливал экспрессию CXCR4 и секрецию TGFfi при трехсуточном культиивровании. На 7-е сут. после введения изопротеренола наблюдалась тенденция к усилению продукции фактора хоуминга SDF-1 в сердечной мышце, которая затем исчезала по мере развития инфаркта миокарда. Локализация и характер изменений, происходящих в миокарде крыс, индуцированных изопротеренолом морфологически соответствовал мелкоочаговому инфаркту миокарда. Гистоморфологический анализ показал, что в случае введения стимулированных ГСК процессы репаративного моделирования миокарда и неоангиогенез усиливались. Проведенные эксперименты показывают перспективность использования новых подходов к усилению потенциальных регенеративных свойств ГСК костного мозга для печения острого инфаркта миокарда.
Ключевые слова: гемопоэтические стволовые клетки, IL-3, инфаркт миокарда.
Кардиоваскулярные заболевания в настоящее время лидируют среди причин смертности и инвалидиза-ции во всем мире. Из-за ограниченного потенциала миокарда к самовосстановлению и обновлению значительная часть сердечной мускулатуры в результате инфаркта теряет свою способность выполнять работу, обеспечивающую насосную функцию сердца, что приводит к
|
||||||||||
|
клеток [2—5]. В многочисленных экспериментальных и клинических исследованиях были получены многообещающие результаты по восстановлению функции сердца при введении стволовых клеток [СЮ как эмбрионального, так и постнатального происхождения. Однако точный механизм этого эффекта остается неизвестным.
В качестве наиболее привлекательных источников постнатальных СК для целей клеточной терапии сердечной недостаточности в настоящее время рассматривают костный мозг, периферическую кровь взрослых и пуповинную кровь новорожденных.
В 2006 г. в ряде европейских стран были проведены клинические исследования влияния интракоронарного введения аутогенных мононуклеарных клеток костного мозга больным с ишемической болезнью сердца [ИБО] [В—8]. Результаты этих испытаний показали, что функциональное улучшение работы сердца [фракция выброса] у всех испытуемых не превышало 5%. В связи с этим ряд авторов высказался за мораторий на дальнейшие клинические испытания [9, 10] до тех пор, пока не будут получены ответы на три главных вопроса:
Какой тип клеток вызывает регенеративный эффект в миокарде?
Каков оптимальный способ введения клеток?
Каковы механизмы действия трансплантированных клеток?
Полагают, что необходимо сконцентрировать усилия на разработке методов стимуляции СК в условиях ех vivo до введения в организм с целью усиления их регенеративного потенциала [11].
Целью исследования явилось изучение влияния стимуляции гемопоэтических стволовых клеток [ГСК] костного мозга в условиях культивирования ex vivo ци-токинами на усиление их индукционно-регенератив-ной способности при экспериментальном инфаркте миокарда.
Материал и методы
Животные. Опыты проводили на беспородных белых крысах обоего пола весом 1 ВО—190 г. Животных содержали в виварии НИИ Кардиологии и внутренних болезней МЗ РК в соответствии с общепринятыми нормами.
Получение суспензии клеток костного мозга (ККМ)[Л2.\. Интактных крыс обездвиживали эфирным рауш-наркозом и декапитировали. Костный мозг выделяли из бедренных и большеберцовых костей путем промывания их средой DMEM [Sigma, США]. Во всех экспериментах жизнеспособность клеток в суспензии, оцениваемая по исключению трипанового синего, превышала 90%.
Приготовление перкола. Для приготовления перкола необходимой плотности, используемого для выделения мононуклеарных клеток из суспензии ККМ, к исходному перколу добавляли стерильный 10 объемных процентов 1,5 М раствора NaCI и затем доводили стерильной де-ионизированной водой до необходимого объема. Объем перкола рассчитывали согласно рекомендациям фирмы-производителя по следующей формуле:
vD=vP-o,ip1Q-o,g/pD-i
где, VQ— объем перкола; V — объем конечного раствора, р — необходимая плотность, p1D— плотность исходного раствора перкола [1,13 г/мл), pD — плотность 1,5 М раствора NaCI [1,058 г/мл].
Фракционирование ККМ на перколе [13]. Суспензию ККМ наносили на двухступенчатый градиент плотности [1,10 и 1,09 г/мл] перкола [Pharmacia, США] и
|
||||||
|
центрифугировали при 1400 g в течение 20 мин. Фракцию с плавучей плотностью 1,09 г/мл отмывали от примеси перкола при 150 g в течение 10 мин средой DMEM и использовали для оценки влияния цитокинов на экспрессию рецепторов CXCR4 для хемокина SDF-1 и продукции TGFp, или подвергали иммуномагнитной сепарации.
Стимуляция ГСК цитокинами. Выделенные клетки в концентрации 2x10В кл./мл культивировали в 96-луноч-ных планшетах в культуральной среде Stemline II [Sigma, США], содержащей различные цитокины, и в течение 72 ч при стандартных условиях культивирования [ + 37°С, 80% влажности и 5% С02] в С02-инкубаторе. После окончания инкубации культуральную среду собирали и исследовали на наличие TGFp с помощью иммуно-ферментного анализа, используя коммерческую тест-систему [R&D Systems, США]. Клеточный осадок использовали для определения экспрессии рецептора CXCR4.
Иммуноферментный анализ CXCR4 на мононуклеарных клетках. По окончанию культивирования с цитокинами клетки собирали из ячеек, переносили в микропробирки типа «эппендорф», дважды отмывали в 5 мМ фосфатно-солевом буферном растворе [ФСБР], содержащем 150 мМ NaCI и 0,5% бычьего сывороточного альбумина [БСА] [Sigma, США], центрифугированием при 500 g в течение 5 мин., ресуспендировали в 0,1 мл в концентрации 10Б кл./мл того же раствора и проводили иммуноферментный анализ на выявление поверхностных клеточных рецепторов CXCR4. Для этого сначала суспензию исследуемых клеток обрабатывали раствором IgG [10 мкг/мл] мыши в течение 15 мин при комнатной температуре, добавляли моноклональные антитела к CXCR4, меченные биотином (R&D Systems, США], из соотношения 10 мкл/105 кл., инкубируя 1 ч при 8°С. После двухкратной отмывки ФСБР-БСА к клеточному осадку добавляли стрептавидин-пероксидазный полимерный конъюгат [Sigma, США] в разведении 1:3000 и инкубировали при 8°С в течение 30 мин. Затем после двухкратной отмывки к осадку добавляли раствор о-фенилендиамина [Sigma, США] в стандартном фос-фатно-цитратном буферном растворе и инкубировали в темноте 30 мин. Реакцию останавливали 4 н раствором серной кислоты. После завершения иммунофер-ментной реакции клетки осаждали центрифугированием, а надосадок переносили в 96-луночный планшет и ко-лориметрировали при 492 нм на иммуноферментном анализаторе. В качестве контроля использовали клетки, не активированные цитокинами.
Иммуномагнитная сепарация. Мононуклеарные клетки с плавучей плотностью 1,09 г/мл согласно инструкции фирмы-производителя [Miltenyi Biotec, США] ресуспендировали в стерильном ФСБР, содержащем 0,5% фетальной телячьей сыворотки [ФТО [БиоЛот, РФ], добавляли к ним магнитные бусы, нагруженные моноклональными антителами к маркеру мышиных ГСК [CD117], и инкубировали 15 мин на льду. Затем взвесь клеток отмывали ФСБР-ФТС, центрифугируя при 300 g 10 мин, и ресуспендировали в 500 мкл ФСБР-ФТС. Взвесь пропускали через колонку MS + , помещенную в магнитный сепаратор Vario MACS [Miltenyi Biotec, США]. Магнитно-меченные ГСК выдавливали плунжером из колонки после удаления ее из магнитного поля. Выделенные CD117+ ГСК подсчитывали в камере Го-ряева и использовали для экспериментов.
Флуоресцентное мечение ГСК. Для оценки тропизма стимулированных и нестимулированных ГСК в ткани сердца CD117+ клетки метили флуоресцентным прижизненным красителем [14]. Для этого клетки ресуспенди-
|
||||||
|
синым IL-3 (PeproTech Asia/CytoLab, Израиль] в течение 72 ч. Выбор цитокинов обусловлен предположением об их участии в активации ГСК и ранних прогениторов, экспериментальное обоснование которого мы сделали ранее [1В]. Результаты иммуноферментного анализа экспрессии рецептора CXCR4 к хемокину SDF-1, под действием цитокинов в различных концентрациях представлены на рис. 1. Только IL-3 в концентрации 20 нг/мл способен достоверно индуцировать экспрессию рецептора к фактору хоуминга SDF-1.
Оценка продукции TGFp клетками CD117+ показала, что IL-3 достоверно стимулирует продукцию этого цито-кина (рис. 2]. Таким образом, трехсуточная инкубация ГСК, выделенных из костного мозга, вызывала экс-прес-сию СХСР4-рецепторов и усиление продукции ангиоген-ного фактора TGFp, что расценивается нами как увеличение их индукционно-регенеративного потенциала.
Регенеративные изменения в тканях сердца при экспериментальном инфаркте миокарда у крыс, индуцированные ГСК, активированными IL-3, мы оценивали с помощью гистологических исследований.
Как было показано ранее, введение изопротеренола вызывает структурные изменения миокарда у всех исследуемых животных [15]. Причем множественные очаги некрозов при введении данной дозы изопротеренола наблюдаются в стенке левого и правого желудочков, межжелудочковой перегородке и верхушке сердца. Локализация и характер изменений, наблюдаемых в миокарде крыс, морфологически соответствует мелкоочаговому инфаркту миокарда.
|
|||||||||||||
|
ровали в 1 мл стерильного ФСБР и добавляли 3,3 мкл 10 мМ водного раствора CFSE C5CB]carboxyfluorescein diacetate N-succinimidyl ester] [Sigma]. После 30-минутной инкубации при 37°С клетки отмывали стерильным ФСБР центрифугированием при 300 g 10 мин, подсчитывали и доводили до концентрации 2х10вкл./мл.
Моделирование мелкоочагового инфаркта миокарда. Мелкоочаговый некоронарогенный инфаркт миокарда у крыс создавали путем внутрибрюшинного введения раствора изопротеренола из расчета 80 мг/кг в 0,2 мл физиологического раствора дважды в день с интервалом 24 ч. Согласно проведенным ранее исследованиям у нелинейных крыс наиболее выраженные морфологические изменения в миокарде [множественные мелкоочаговые некрозы] возникали при такой схеме и дозе введения [15].
В исследованиях были использованы CD117+ клетки, стимулированные и нестимулированные рекомби-нантным крысиным IL-3 [PeproTech Asia/CytoLab] в дозе 50 МЕ/мл. 10Б клеток, ресуспендированные в 0,5 мл ФБР вводили в бедренную вену через 9 сут. после последней инъекции изопротеренола.
Определение SDF-1 в гомогенатах сердца. Крыс обездвиживали эфирным рауш-наркозом и декапитировали. Извлеченные сердца помещали в ФСБР и тщательно ополаскивали, подсушивали фильтровальной бумагой и взвешивали на электронных весах. Затем дважды быстро замораживали в жидком азоте и размораживали, растирали в фарфоровой ступке в 2 мл ФСБР. Полученный гомогенат центрифугировали в течение 30 мин при 0°С при 30000 д. Супернатант подвергали иммуно-ферментному анализу на наличие SDF-1 с помощью коммерческой тест-системы (RS.D Systems, США]. Проводили перерасчет концентрации SDF-1 на объем супер-натанта и высчитывали удельное содержание SDF-1 в фг/г веса ткани сердца.
Гистоморфологический анализ. Материал для гистологического исследования фиксировали в 10% забу-ференном растворе формалина, для электронно-микроскопического — в 2,5% растворе глютаральдегида [Sigma, США]. Проводку осуществляли по общепринятой гистологической методике. Гистологические срезы окрашивали гематоксилином и эозином, пикрофукси-ном по Ван Гизону. Препараты изучали на световом микроскопе «Leica» DM 4000В с цифровой фотокамерой «Leica» DFC 320.
Для оценки тропизма ГСК в тканях сердца CFSE-ме-ченные CD34+ клетки вводили в бедренную вену и через 3 сут. животных выводили из эксперимета, извлекали сердца и готовили криостатные срезы на криокамере Leika СМ 151 OS при минус 30—35°С. Срезы исследовали под микроскопом Axiostar plus с ультрафиолетовым светом при увеличении х400 и фотографировали на цифровую камеру.
Статистический анализ. Полученные данные обрабатывали методами математической статистики, используя прикладную программу Microsoft Excel. Вычисляли среднюю арифметическую, среднюю квадратическую ошибку средней арифметической и достоверность различия средних [Р], используя функцию ПЕСТ.
Результаты и обсуждение
С целью индукции у ГСК повышенной регенеративной активности инкубировали CD117+ клетки, полученные из фракции ККМ с плавучей плотностью 1,09 г/мл от интактных крыс, в присутствии различных рекомби-нантных мышиных цитокинов IFNy, IL-2, G-CSF или кры-
|
|||||||||||||
 |
|||||||||||||
|
Рис. 1. Экспрессия CXCR4 клетками CD117* при культивировании в присутствии цитокинов
|
|||||||||||||
 |
|||||||||||||
|
Рис. 2. Продукция TGFp клетками CD117+ под влиянием IL-3 при культивировании в течение 72 ч
|
|||||||||||||
|
Животных с экспериментальной моделью мелкоочагового инфаркта миокарда разделили на 3 группы. В первой группе животным внутривенно вводили стерильный ФСБР, во второй — неактивированные ГСК, в третьей — активированные IL-3 ГСК. Гистологические исследования тканей сердца проводили на 12-е и 21-е сут. от последнего введения изопротеренола.
На 12-е сут. в контрольной группе животных наблюдалась классическая картина мелкоочагового инфаркта миокарда (рис. ЗА]. Микроскопия полутонких срезов показала некроз отдельных кардиомиоцитов, отек стромы, исчезновение гликогена в цитоплазме кардиомиоцитов [рис. 4А). Отмечались уменьшение поперечной исчерчен-ности миофибрилл, расслабление саркомеров и очаговая контрактурная дегенерация кардиомицитов. Наблюдались также дефекты плазматической мембраны, выраженный отек стромы, гомогенизация цитоплазмы, начало организации рубцовой ткани.
|
В группе животных с введением неактивированных клеток световая микроскопия показала нечеткие границы ядер, сохранение уплотнения хроматина [рис. ЗБ]. В отдельных участках наблюдалось восстановление поперечной исчерченности миофибрилл. Микроскопия полутонких срезов выявила в зоне инфаркта в кардио-миоцитах накопление гликогена, увеличение поперечной исчерченности миофибрилл, что свидетельствовало об улучшении энергетического обмена и восстановлении сократимости. При этом сохранялись контрактурные изменения и сближение анизотропных дисков [рис. 4Б].
В группе животных с введением IL-3-активированных ГСК в зоне повреждения миокарда выявлялись очаги образования новых микрососудов [рис. ЗВ]. На полутонких срезах видны четкие мембраны ядер кардиомиоцитов [рис. 4В). Местами наблюдался отек ткани, появлялся «капельный» гликоген, поперечная исчерченность миофибрилл была хорошо выражена [значительное улучшение
|
|||||||||||
 |
||||||||||||
|
Рис. 3. Миокард крысы на 12-е (А, Б, В] и 21-е (Г, Д, Е] сут. после последнего введения изопротеренола: А, Г- контрольная группа; Б,Д- введение неактививрованных ГСК; В,Е - введение активированных ГСК. Окраска: гематоксилин и эозин. Ув.: А-В х200, Г-Е хЮО
|
||||||||||||
 |
||||||||||||
|
Рис. 4. Миокард крысы через 12 сут. после последнего введения изопротеренола:
А - интактная крыса; Б - введение неактивированных ГСК; В - введение активированных ГСК.
Полутонкий срез. Окраска: метиленовый синий, азур II, основной фуксин. Ув. хЮОО
|
||||||||||||
|
энергетического обмена и сократимости), но сохранялись единичные участки со сближением анизотропных дисков.
Через 21 сут. после введения изопротеренола были выявлены с помощью световой микроскопии следующие изменения в миокарде.
В контрольной группе [рис. ЗП в зоне рубцующегося инфаркта миокарда появились немногочисленные сосуды. Мышечные волокна непосредственно внутри соединительнотканного очага выглядели атрофичными, кардиомиоциты, расположенные вокруг соединительнотканного рубца, напротив, были гипертрофированы. У отдельных особей встречались и более тяжелые изменения кардиомиоцитов, имеющие дистрофический и некробиотический характер, локализующиеся вблизи эндокарда, которые характеризовались прогрессивным исчезновением саркоплазмы.
В группе животных после введения неактивированных ГСК в области верхушки сердца наблюдалась неправильной формы зона инфаркта миокарда в стадии организации [рис. ЗД). Зона некроза кардиомиоцитов замещалась новообразованной рыхлой соединительной тканью, в которой определялись немногочисленные тонкостенные сосуды, а также островки сохранившихся кардиомиоцитов. Мышечные клетки, прилежащие к зоне поражения, были гипертрофированы.
В группе животных после введения активированных ГСК в миокарде обнаруживались множественные очаги пролиферации соединительнотканных элементов вокруг погибших групп мышечных волокон. Кроме лейкоцитов среди пролиферирующих клеток наблюдались макрофаги, фибробласты, единичные лимфоидные клетки. Среди сформированной фиброзной ткани отмечались многочисленные тонкостенные сосуды. Мышечные волокна в непосредственной близости от зоны инфаркта были гипертрофированы и содержали крупные полиморфные ядра. Таким образом, в сердце стимулировался процесс появления в поврежденном миокарде макрофагов, активно фагоцитирующих клеточный детрит, а также усиленное формирование новых микрососудов.
Анализ удельного содержания SDF-1 в тканях интакт-ных и инфарктных сердец представлен на рис. 5. В течение первых 7 сут. после введения изопротеренола наблюдается тенденция к усилению продукции фактора хоуминга SDF-1 в сердечной мышце, которая затем исчезает по мере развития ИМ.
|
С целью оценки усиления тропизма активированных ГСК в ткани сердца при инфаркте миокарда мы вводили флуоресцентно-меченные ГСК интактным крысам и крысам опытных групп на Э-е сут. после последнего введения изопротеренола. Оказалось, что меченые клетки через 3 сут. наблюдались только в препаратах сердец животных с моделью мелкоочагового инфаркта. На рис. Б отчетливо видно, что флуоресценция выглядит значительно ярче в случае использования стимулированных IL-3 клеток [рис. ВБ).
|
|||||||||||||
 |
||||||||||||||
|
Рис. В. Миокард крыс через 3 сут. после введения
очищенных ГСК:
А - флуоресценция меченных ГСК,
нестимулированных IL-3;
Б - флуоресценция меченных ГСК,
стимулированных IL-3
|
||||||||||||||
 |
||||||||||||||
|
В основу идеологии усиления регенеративных эффектов постнатальных стволовых клеток в сердечной ткани при инфаркте миокарда мы заложили три методических приема:
1) использование «очищенных» CD117+ ГСК;
2) стимуляция экспрессии CXCR4; 3] стимуляция продукции TGFp.
Установлено, что CD117, маркер ранних ГСК, присутствует также на эндотелиальных прогениторных клетках [17, 18], мобилизация которых из костного мозга наблюдается на ранних стадиях развития инфаркта миокарда [19]. Ранее мы показали присутствие в костном мозге мышей CD34 + клеток с плавучей плотностью 1,09 г/мл [1В]. Поэтому в настоящем исследовании для выделения CD117+ клеток с помощью иммуномагнит-ной сепарации мы использовали более тяжелую моно-нуклеарную фракцию ККМ, чем это принято в подобных исследованиях [1,077 г/мл).
|
||||||||||||||
|
Рис. 5. Продукция SDF-1 в тканях сердца интактных и опытных крыс в динамике развития мелкоочагового инфаркта миокарда
|
||||||||||||||
|
Вопрос об усилении направленной миграции ГСК в область повреждения ткани интенсивно обсуждается [20]. Самым изученным хемоаттрактантом для ГСК на сегодняшний день является белок SDF-1 (stroma-derived factor-1). В норме он продуцируется стромальными клетками костного мозга и удерживает ГСК в своей стволовой нише за счет экспрессии на их поверхности рецептора для хемокинов CXCR4. Имея такой рецептор, ГСК мигрируют в сторону большей концентрации SDF-1 [21-23]. В нашем исследовании отмечается усиление продукции SDF-1 в миокарде в ранние сроки развития инфаркта. Мы также показали, что IL-3 индуцирует усиление экспрессии рецептора CXCR4 на CD117+ клетках. Оба этих события, по-видимому, приводят к увеличению численности вводимых флуоресцентно-меченных ГСК в сердечной мышце.
ЛИТЕРАТУРА:
1. Jessup М., Brozena S. Heart failure. N. Engl. J. Med. 2D03; 348: 2007-18.
2. Lovel M.J., Mathur A. The role of stem cells for treatment of cardiovascular disease. Cell Prolif. 2004; 37: 67-87.
3. Kovacic J.С Muller D.W., Harvey R., Graham R.M. Update on the use of stem cells for cardiac disease. Intern. Med. J. 2005; 35: 348—56.
4. Smits A.M., van Vliet P., Hassink R.J. et al. The role of stem cells in cardiac regeneration. J. Cell. Mol. Med. 2005; 9: 25-36.
5. Marin-Garcia J., Goldenthal M.J. Application of stem cells in cardiology:Where we are and where we are going. Cur. Stem Cell Res. Ther. 2006; 1: 1-11.
6. Lunde K., Solheim S., Aakhus S. et al. Intracoronary injection of mononuclear bone marrow cells in acute myocardial infarction. N. Engl. J. Med. 2006; 355: 1199-209.
7. Schachinger V., Erbs S., Elsasser A. et al. Intracoronary bone marrow-derived progenitor cells in acute myocardial infarction. N. Engl. J. Med. 2006; 355: 1210-21.
B. Assmus В., Honold J., Schachinger V. et al. Transcoronary transplantation of progenitor cells after myocardial infarction. N. Engl. J. Med. 2006; 355. 1222-32.
9. Nadal-Ginard В., Fuster V. Myocardial cell therapy at the crossroads. Nature Clin. Pract. Cardiovasc. Med. 2007; 4: 1.
10. Adler E.D., Maddox T.M. Cell therapy for cardiac disease: where do we go from here? Nature Clin. Pract. Cardiovasc. Med. 2007; 4: 2-3.
11. Seeger F.H., Zeiher A.M., Dimmeler S. Cellenhancement strategies for the treatment of ischemic heart disease. Nature Clin. Pract. Cardiovasc. Med. 2007; 4: S110-3.
12. Subiza J.L.Vinuela J.E., Rodriguez R. et al. Development of splenic natural suppressor CNS) cells in Ehrlich tumor-bearing mice. Int. J. Cancer 1989; 44: 307-14.
13. Закирьянова Т.К., Беляев H.H. Изопикническое разделение клеток костного мозга. Методы молекулярной биологии, биохимии, иммунохимии и биотехнологии, Алматы 1999: 142—5.
14. Current Protocols in Immunology Online. UNIT 4.9 Use of the intracellular fluorescent dye CFSE to monitor lymphocyte migration and proliferation, John Wiley & Sons, 2003.
|
Одним из многочисленных плейотропных эффектов TGFf3 является его способность стимулировать образование кровеносных сосудов, влияя на миграцию, пролиферацию эндотелиоцитов, а также образование трубчатых структур [24]. Способность ГСК к индуцированной и спонтанной продукции TGFf3 показана была нами ранее [1В, 25]. Таким образом, доказано, что ГСК, стимулированные IL-3, усиливают секрецию TGFf3. Возможно, именно с этим связано усиление неоваскуляризации в миокарде крыс, наблюдаемое нами после введения стимулированных ex vivo клеток.
Проведенные нами эксперименты показывают перспективность использования новых подходов к усилению потенциальных регенеративных свойств ГСК костного мозга для лечения острого инфаркта миокарда.
15. Поминова Н.М. Роль опиоидного тетрапептида в регуляции функциональной активности надпочечников при экспериментальной сердечно-сосудистой патологии. Дисс. ...канд. биол. наук, Алма-Ата, Томск, 1992.
16. Рысулы М.Р., Беляев Н.Н., Шалбаева А.Д., и др. Гемопоэтические стволовые клетки. Ред. М.А.Алиев, Мектеп, Алматы, 2005; 133.
17. Li T.-Sh., Hamano К., Nishida М. et al. CD117+ stem cells play a key role in therapeutic angiogenesis induced by bone marrow eel implantation. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2003; 285: H931-7.
18. Wojakowski W., Tendera M., Michaiowska A. et al. Mobilization of CD34/CXCR4+, CD34/CD117+, c-met+ stem cells, and mononuclear cells expressing early cardiac, muscle, and endothelial markers into peripheral blood in patients with acute myocardial infarction. Circul. 2004; 110: 3213—20.
19. Massa M., Rosti V., Ferrario M. et al. Increased circulating hematopoietic and endothelial progenitor cells in the early phase of acute myocardial infarction. Blood 2005; 105: 199-206.
20. Kucia M., Reca R., Miekus K. et al. Trafficking of normal stem cells and metastasis of cancer stem cells involve similar mechanisms: Pivotal role of the SDF-1-CXCR4 axis. Stem cells. 2005; 23: 879-94.
21.Yamaguchi J., Kusano K.F., Masuo 0. et al. Stromal cell-derived factor-1 effects on ex vivo expanded endothelial progenitor cell recruitment for ischemic neovascularization. Circul. 2003; 107: 1322—8.
22. AscariA., UnzekS., PopovicZ.B. etal. Effect of stromal-cell-derived factor 1 on stem-cell homing and tissue regeneration in ischemic cardiomyopathy. Lancet 2003; 362: 697-703.
23. Hill W.D., Hess D.C., Martin-Studdard A. et al. SDF-1 (CXCL121 is upregulated in ischemic penumbra following stroke: association with bone marrow cell homing to injury. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 2004; 63: 84-96.
24. Holderfield M.T., Hughes Ch.C.W. Crosstalk between vascular endothelial growth factor, notch, and transforming growth factor-p in vascular morphogenesis. Circul. Res. 2008; 102: 637—52.
25. Belyaev N., Perfilieva Yu., Kustova E. et al. Peripheral blood of cancer patients contents high level of CD34+ cells that can produce TGFp. Molecular targets for cancer therapy: Fifth biennial meeting «Regulatory Myeloid suppressor cells in health and disease», March 12—15, 2009, Cleawater Beach, Florida 2009: 53.
|
||||||
|
Поступила 19.10.2009
|
|||||||