...
Registration number: ПИ №ФС77-235В7,
8th March 2008. ISSN: 1815-445X



Клеточное обновление в кишечном эпителии
в условиях реактивных изменений слизистой оболочки
Р.В. Деев*\ ТА. Ахмедов1, В К. Комяков s
1  Военно-медицинская академия им. СМ. Кирова, Санкт-Петербург
3 Государственная медицинская академия им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург
Cell self-renewal in intestinal epithelium under conditions of cell reactive alterations
R.V. Deev* \TA. Akhmedov1, B.K. Komyakov г ' Military Medical academy, Saint Petersburg
2 State Medical academy named after I.I. Mechnikov, Saint Petersburg
A histological study of biopsy specimens in=52) was carried out. The specimens were obtained from the ileum mucous membrane which had contacted with urine in new bladders for a long time. Immunohistochemistry included an assessment of enterocyte expression of cell cycle markers Ki-B7, Bcl2, p53. Epithelial proliferation was determined to be activated as early as 4—5 months after beginning to contact with urine. The process of alteration of proliferative activity consists of three phases: 1) activation, the proliferation index is 70—86% [during the first year), 2) stabilization at the level of 70% during the second year, and 3) recurrent increase up to 97% later on. There is a hypothesis that similar alterations are due to direct influence of intestinal epithelium on stem cells. The expression level of Bcl2, p53 remained low.
Выполнено гистологическое исследование биоптатов (n = 52J слизистой оболочки подвздошной кишки, длитель­ное время контактировавшей с мочой в составе мочевых ре­зервуаров. Иммуногистохимическое исследование включало определение экспрессии энтероцитами маркеров клеточного цикла — Ki-B7, Вс12, р53. Установлено, что пролиферация эпителия активируется уже через 4—5 мес. после начала кон­такта с мочой. Процесс изменения пролиферативной актив­ности включает три фазы активацию — индекс пролифера­ции 70—86% (первый год]; стабилизацию на уровне 70% в течение второго года и повторный подъем в последующие сроки до 97%. Высказано предположение, что подобные из­менения связаны с непосредственным влиянием на стволо­вые клетки кишечного эпителия. Уровень экспрессии Вс12, р53 оставался низким.
Ключевые слова: кишечный эпителий, пролиферация, апоптоз, кишечная стволовая клетка, Ki-B7, Bcl2, р53, моче­вой резервуар.
Key words: intestinal epithelium, proliferation, apoptosis, intestinal stem cell, Ki-67, Bcl2, p53, new bladder.
Эпителий кишечного типа во взаимодействии с соединительнотканной стромой формирует в кишке мор-фофункциональный комплекс «крипта-ворсинка», кото­рый представляет собой саморегулирующуюся систему с закономерной убылью энтероцитов, чей пул воспол­няется за счет пролиферации малодифференцированных клеточных элементов в крипте [1, 2]. В нижней трети крипт располагаются стволовые клетки кишечного эпи­телия [недифференцированные эпителиоциты], которые дивергентно дифференцируются, по крайней мере, в че­тырех направлениях с образованием каемчатых энте­роцитов (призматических эпителиоцитов ворсинки], бокаловидных мукоцитов (бокаловидных экзокриноци-тов], клеток Панета (экзокриноцитов с ацидофильными гранулами) и энтероэндокринных клеток (желудочноки-шечных эндокриноцитов] [2—5]. Очевидно, что в услови­ях нормального (физиологического) функционирования клеточные диффероны, входящие в состав конкретной ткани, должны находиться в стандартном (физиологи­ческом) соотношении, обеспечивающим полноценное выполнение функций, включая физиологическую реге­нерацию — клеточное обновление [В]. Следует предпо­ложить, что в условиях измененной среды эти соотно­шения могут меняться для поддержания исходного гомеостазиса ткани, следовательно, носят приспосо­бительный характер [7]. Выражение индивидуальной (тканевой) меры компенсаторно-приспособительных морфофункциональных преобразований в тканях под воздействием различных сверхфизиологичных факто­ров принято называть реактивностью [В].
Мочевые резервуары представляют собой биоарти-фициальные вместилища для мочи, формируемые из различных отделов кишечной трубки. Наибольшее рас­пространение получили тонкокишечные мочевые ре­зервуары. Их функционирование сопряжено с рядом необычных условий, одним из которых является суще­ствование эпителия кишечного типа в нефизиологич­ных для него условиях. Под воздействием компонентов мочи слизистая оболочка претерпевает ряд реактив­ных изменений, в том числе связанных с изменением клеточного цикла. Последнее обстоятельство представ­ляется весьма актуальным, поскольку в значительной степени определяет прогноз для пациента, свидетель­ствует о риске злокачественной трансформации.
Считается, что позиция стволовых клеток кишечно­го эпителия соответствует 4—5 клетке в крипте [1, 4, 5]. Последние выглядят как бескаемчатые энтероциты. На светооптическом уровне они отличаются от диффе­ренцированных клеток меньшими размерами, большей базофилией цитоплазмы, слабым развитием структур­ных признаков специализации [8], в базальной части клетки имеется относительно крупное округлое ядро. Электронномикроскопически в их цитоплазме обнару­живаются мелкие округлые митохондрии, 2—3 уплощен­ные цистерны комплекса Гольджи, немногочисленные, равномерно распределенные по цитоплазме профили гранулярной эндоплазматической сети [2]. Вместе с тем, биохимическая активность, основанная на эксп­рессии специфического для недифференцированных [стволовых] энтероцитов паттерна генов позволяет
+

идентифицировать их в эпителиальном ряду. Они и их ближайшие потомки характеризуются активной эксп­рессией белка Ki-67. Энтероциты вступают в диффе-ренцировку лишь после 4-го митоза, слизистые клетки становятся различимыми после 3-го деления предше­ственников на уровне 10—15 клеточных позиций. Пред­шественники энтероэндокринных клеток вступают в де­ление всего дважды, причем 2-е деление происходит на уровне 4—В позиций. Клетки Панета дифференциру­ются сразу из разделившихся стволовых клеток. Они не мигрируют к вершине ворсинки и всегда сохраняются на дне крипт.
В экспериментах с предшественником синтеза РНК [3Н]уридином показано, что его включение происходит только в клетках крипт, что говорит о том, что для реа­лизации своих специфических функций дифференци­рованные энтероциты используют РНК, накопленную в недифференцированном состоянии, а по мере диффе-ренцировки процессы транскрипции с ДНК блокируются [8], вероятно блокируется и митоз.
Получены данные, согласно которым клетки крипт, находящиеся в 4—5 позиции, экспрессируют антиапоп-тотические белки, в частности Bcl2. Активная супрес­сия запрограммированной клеточной гибели, по мнению Л.И. Аруина [1998], может маркировать пул стволовых энтероцитов [1, 9]. Однако надежных и однозначных мар­керов этих клеток пока нет [10]. К сегодняшнему дню описано множество экспрессируемых белков, совокуп­ность которых характерна именно для энтероцитов, ло­кализованных в 4-5 позиции: активность теломеразы, Tcf4, EphB3, P-PTEN, P-Akt, Noggin, Lgr5, Bmi-1 [4, 5].
Цель исследования — определить закономерности изменения клеточного обновления кишечного эпителия в мочевых резервуарах, сформированных из подвздош­ной кишки.
Материал и методы
Исследование выполнено на материале щипковых биопсий [п = 52], полученных во время диагностичес­ких цистоскопии у пациентов [N = 31], перенесших рекон­структивную илеоцистопластику в сроки от 4 до 72 мес. Материал нормальной подвздошной кишки получали интраоперационно.
После стандартной гистологической обработки изго­тавливали гистологические срезы, которые окрашивали гематоксилином и эозином. При изучении препаратов обращали внимание на состояние гистоархитектоники слизистой оболочки, сохранность структурно-функцио­нальных единиц, целостность эпителиального пласта, выраженность воспалительных процессов.
Для оценки процессов пролиферации и апоптоза выполняли иммуногистохимическое исследование. Ре­акции ставили методом EnVision™/HRP (DakoCytomation, Дания]. Для демаскировки антигенов депарафинирован-ные срезы подвергали высокотемпературной обработке на водяной бане в цитратном буфере [рН = 6,0] (98°С, 25 мин.]. Далее срезы инкубировали с первичными ан­тителами Ki-67 [клон MIB-1, DakoCytomation, Дания] — для выявления пула пролиферирующих клеток; Bcl2 [клон 124, DakoCytomation, Дания) —для выявления клеток, в которых блокирован апоптоз; мутантный р53 [клон DO-7, DakoCytomation, Дания] — для определе­ния клеток, в которых блокирован процесс апоптоза и имеются предпосылки к злокачественной трансформа­ции. Для визуализации продукта иммуногистохимичес-кой реакции использовали диаминобензидин DAB-kit [DakoCytomation, Дания]. Результат положительной
реакции: темно-коричневое ядерное окрашивание — для Ki-67 и р53; ядерное и цитоплазматическое окрашива­ние — для Bcl2.
Выполняли морфометрическое исследование, в ходе которого определяли долю положительно окрашенных клеток в системе «крипта-ворсинка», при этом анали­зировали не менее 1000 эпителиоцитов в препарате.
Результаты и обсуждение
При изучении гистологических препаратов, окрашен­ных гематоксилином и эозином, выявлено, что слизис­тая оболочка претерпевает существенные изменения. В основном они сводятся к изменению архитектоники си­стем «крипта-ворсинка». Ворсинки подвергаются атро­фии, в то время как в течение десятков месяцев крипты сохраняют свою глубину. Отмечается резкое увеличение количества бокаловидных клеток, особенно в биоптатах, полученных в ранюю фазу реактивного процесса ком­пенсаторной перестройки — в первые 2—3 года (до 5), в дальнейшем их число постепенно снижалось. При имму-ногистохимическом исследовании процессов клеточного обновления в эпителии, выстилающем мочевые резерву­ары, удалось выявить ряд характерных изменений.
Установлено, что при попадании кишечного эпите­лия в условия постоянного контакта с мочой происхо­дит значимое усиление пролиферации. Так, уже через 4—5 мес. доля делящихся в крипте энтероцитов дости­гала 70—86%, в то время как в норме Ki-67+ клетки наблюдаются в криптах с 5 по 19 клеточные позиции, что, по нашим данным, составляет около 60% от всех клеток в крипте. Следует отметить, что в условиях ре­активных изменений всей слизистой оболочки проли-ферирующие клетки также обнаружены на ворсинках, что в обычных условиях не наблюдается, а также среди клеток Панета [рис. 1А, Б, В].
Через год ядра энтероцитов приобретали вытянутую форму, в целом клетки характеризовались плотным расположением и высокой интенсивностью пролифера-тивных процессов. Через 15 мес. значительная часть энтероцитов в крипте имели фенотип бокаловидных мукоцитов, их ядра были положительно окрашены в ходе иммуногистохимической реакции [рис. 2А).
В дальнейшем пролиферативная активность в тече­ние десятков месяцев сохранялась на уровне превыше­ния нормы, а к наиболее поздним срокам наблюдений — 72 мес. достигла в крипте уровня 97%. Кроме того, через 72 мес. при нарастающих явлениях атрофии вор­синок и ядерного полиморфизма покрывающих их эпи­телиоцитов, отмечается пролиферация большого числа клеток — до 20—30% энтероцитов, причем, экспрессия белка характерна и для фенотипически дифференци­рованных форм — бокаловидных мукоцитов [рис. 2Б]. Отмечалась тенденция к тому, что ядра клеток распо­ложенных ближе к вершинам ворсинок прокрашивались менее интенсивно, чем находящиеся у ее основания.
Трактовка иммуногистохимических данных по выяв­лению белков клеточного цикла в любых тканях, как в норме, так и при пограничных состояниях весьма слож­на и, в ряде случаев неоднозначна [1]. До появления маркеров пролиферативной активности — Ki-67 и PCNA, процесс пролиферации возможно было установить либо непосредственно регистрацией фигур митоза, либо при помощи авторадиографии. Митоз включает в себя по­мимо кариокинеза подготовительные и последующие фазы, остававшиеся за пределами получаемых данных. Поскольку Ki-67 маркирует клетки в течение всех фаз митоза за исключением GD [PCNA — только S-фазу] его

можно признать наиболее достоверным показателем пролиферативной активности [11, 12]. С учетом корот­кого срока жизни энтероцитов [около 3—4 сут.] процесс деления [несколько часов, по некоторым данным — до 10 [11]) занимает достаточно важную часть жизни клет­ки. Вероятно, именно этим объясняется и постепенное уменьшение интенсивности окраски от основания вор­синки к ее вершине. Кроме того, значимое увеличение доли делящихся клеток как в крипте, так и на ворсинках на поздних сроках наблюдения может свидетельство­вать об увеличении скорости клеточного обновления в условиях реактивных изменений. В результате этого на
ворсинку выходят энтероциты, не завершившие диф-ференцировку и дифференцирующиеся уже на месте, что подтверждается и обнаружением большого числа положительно окрашенных клеток на ворсинках и по­степенным уменьшением интенсивности окрашивания от крипты к ворсинке. Этим же может быть объяснено и обнаружение Ki-B7+ бокаловидных клеток. Вместе с тем, по современным представлениям, бокаловидные муко-циты, являясь дифференцированным клеточным типом, способны в некоторых условиях к дальнейшей диффе-ренцировке [13], возможно необратимо не блокирован и их пролиферативный потенциал.
Рис. 1. Экспрессия Ki-67 в эпителиоцитах подвздошной кишки в условиях реактивных изменений: А - ворсинка, 4 мес; Б - крипты, 15 мес; В - положительно окрашенные клетки Панета, 4,5 мес. Стрелка - Ki-67* клетка. Окраска: анти-К'\-67 и гематоксилин. Ув.: А, Б - х 100, В - х250
Рис. 2.
Экспрессия Ki-67 в эпителиоцитах подвздошной
кишки в условиях реактивных изменений:
А - поверхностный эпителий, 12 мес;
Б - экспрессия Ki-67 бокаловидными клетками,
72 мес. Стрелки - Ki-67* клетки. Окраска: aHTH-Ki-67
и гематоксилин. У в.: А - х250, Б - х400
Несколько иные результаты были получены А.Е. Dellis и соавт. [2008), которые на материале от 50 пациентов в сроки, соответствующие нашему исследованию, по­казали, что пролиферация энтероцитов в этих условиях нарастает лишь с В-го мес. Несмотря на схожесть тен­денции, доля пролиферирующих клеток, определенная авторами, значимо отличалась от наших данных на всех сроках и не превышала 20% [15]. Объяснением этому может служить тот факт, что авторы вычисляли сред­нюю долю положительно окрашенных ядер для всех энтероцитов эпителиальной выстилки, без учета их то­пографической локализации. Подобный подход может быть оправдан на самых поздних сроках наблюдений, когда атрофия ворсинок достигает весьма значимых показателей и становится невозможным провести чет­кую границу между криптой и ворсинкой. Однако остает­ся неясным, почему во всех случаях пролиферативная активность реактивно измененных энтероцитов, опре­деленная с использованием антител к Ki-67 была зна­чительно ниже, чем в норме.
Обнаружение положительно окрашенных клеток в дне крипты — между клетками Панета может демонстриро­вать сохранение ими пролиферативных возможностей. Полученные данные имеют особое звучание в свете разрабатываемой гипотезы о том, что среди них име­ется некоторое число клеток, выполняющих роль соб­ственного камбиального резерва, активирующегося при необходимости, то есть способных к независимому са­мообновлению [14], что важно для поддержания гомео-стазиса в крипте при экстремальных воздействиях. Является ли это явление физиологичным или данный механизм включается только в условиях реактивных изменений остается неясным.
Количественные показатели митотической активно­сти, полученные нами (табл.), демонстрируют тенден­цию развития реактивных изменений в эпителии под­вздошной кишки в условиях контакта с мочой, которая заключается в быстрой активации этого процесса уже через 4—4,5 мес, с последующей стабилизацией и по­вторным резким усилением после 2 лет воздействия мочи.

Экспрессия маркеров клеточного цикла в эпителии мочевых резервуаров
Срок (мес.)
Ki-67 (%)
Bcl2 (%)
р53 (%)
крипта
ворсинка
средний показатель
крипта
ворсинка
средний показатель
крипта
ворсинка
средний показатель
Норма
66
0
30
1
0
0,4
0
0
0
4
71
5
38
5
1,6
3,3
10
1
4,5
4,5
86,2
5
45
0,8
1,3
1
6,8
0,6
5,5
12
86,5
22
54,2
-
-
-
7,4
0
3
15
76
3
39,6
4,5
2,3
1,3
3,3
0,5
1,9
19
60
17
38,5
2,4
1,6
2
0
0
0
31
94
31
62,5
0
0
0
0
0
0
72
97
-
40
0
0
0
3
14,0
6,4
В 1999 г. группа итальянских авторов получила дан­ные, свидетельствующие о похожей динамике. По ма­териалу исследования биопсий от 30 пациентов в сроки до 48 мес. было показано снижение уровня пролифе­рации всего эпителиального пласта до 53% в течение первого года и дальнейшее двукратное увеличение в оставшиеся сроки [1В].
В отечественном исследовании, повышение показа­теля пролиферации отмечалось лишь в поздние сроки — спустя Б лет после операции [17]. Однако, применен­ные авторами методики математического и статисти­ческого анализа делают невозможным сопоставление собственных данных с их результатами.
Экспрессия Bcl2, являющегося одним из маркеров клеток, в которых подавлен апоптоз, на всех сроках на­блюдения была на низком уровне, однако в ряде случа­ев значимо превышала нормальные показатели для подвздошной кишки [см. табл.]. Полученные результа­ты показывают, что значимое усиление экспрессии Bcl2 по сравнению с нормальной подвздошной кишкой отме­чается только через год-полтора и достаточно быстро снижается вплоть до полного отсутствия, следовательно,
предполагать явное усиление апоптоза на фоне реак­тивных изменений энтероцитов оснований нет.
Bcl2+ клетки располагались преимущественно в строме ворсинок и соединительной ткани собственной пластинки в виде округлых клеток, являющихся, по-видимому, различными субпопуляциями лимфоцитов. Обнаруживались они и в эпителиальном пласте в виде межэпителиальных лимфоцитов. Экспрессия Bcl2 эпи-телиоцитами отмечалась как в виде ядерного, так и бледного цитоплазматического окрашивания. После­днее не противоречит как протоколу фирмы-произво­дителя, так и данным иных авторов, и обусловлено на­хождением данного белка в мембране митохондрий. Положительно окрашенные ядра энтероцитов всегда были малочисленными [рис. ЗА]. Следует отметить, что через 4 мес. эпителиальные клетки с выраженным ци-топлазматическим окрашиванием появлялись среди клеток Панета, [рис. ЗБ], позже — они исчезали. Сход­ные результаты были получены в исследовании [15]. Авторы установили аналогичную тенденцию — постепен­ное увеличение Bcl2+ клеток в срок до 12—24 мес. с пос­ледующим уменьшением экспрессии.
Рис. 3.
Экспрессия Вс12 в эпителиоцитах подвздошной
кишки в условиях реактивных изменений:
А - ворсинка, поперечный срез, 15 мес;
Б - Вс\2+ клетки среди клеток Панета,
тангенсальный срез, 4,5 мес.
Окраска: анти- Вс\2 и гематоксилин.
Ув.:А-х100,Б-х250

Подавление апоптоза на всех сроках наблюдения не носило выраженного характера, что вероятно связано с незначительной индукцией апоптоза компонентами мочи. Выявление большого количества Вс12+ клеток могло бы свидетельствовать об иммортализации энте-роцитов, что, в свою очередь маркировало бы опасность их онкотрансформации.
Экспрессия мутантного р53 — характерный признак трансформированных клеток, у которых, в отличие от нормальных, измененный р53 не может выполнить свою функцию — инициировать апоптоз при повреждении ге­нома. Он обнаруживается не только в опухолях, но и при различных дисплазиях, воспалении и др. [1, 18]. В эпи­телии нормальной подвздошной кишки нами не выявле­на его экспрессия как в крипте, так и на ворсинках. В эпителиоцитах мочевого резервуара в первый год функционирования до 1D% эпителиоцитов крипты были р53-положительными, на ворсинках их количество было существенно ниже Сем. табл.]. При этом у некоторых па­циентов белок найти вообще не удалось — как правило, на 2—3-м году контакта слизистой оболочки с мочой.
Следовательно, процессы изменения динамики кле­точного обновления в эпителии в условиях реактивных изменений, сопряженных как с непосредственным дей­ствием компонентов мочи, так и активацией в составе стромы клеток кроветворного ряда — лимфоцитов, гра-нулоцитов, тучных клеток — вырабатывающих большой
спектр биологически активных веществ, являющихся цитокинами и регуляторами клеточного цикла приводят к обнаруженным изменениям: резкому усилению проли­ферации уже в первые месяцы, постепенному выходу на «плато» к срокам 3—5 лет и в дальнейшем — росту этого показателя. Очевидно, что такое усиление пролифератив-ной активности приводит к выходу малодифференциро-ванных клеток на ворсинки и их более полному контакту с компонентами мочи. На этом фоне мы констатируем преимущественную мукоцитарную дифференцировку эн-тероцитов, что отчасти, возможно, нивелирует патоген­ное действие мочи на клетки. При этом — увеличение доли пролиферативной активности на поздних сроках создает реальный риск значимых с точки зрения онко­логической трансформации. Об этом же свидетельствует появление клеток положительных на мутантный р53. Процесс этот двухфазный. Первая фаза занимает пер­вый год, в дальнейшем, когда в целом в слизистой обо­лочке нарастают адаптационные структурные преобра­зования, его экспрессия снижается.
Следует отметить, что полученные данные, несмотря на свидетельства в пользу усиления пролиферативной активности энтероцитов и их самообновления, подтвер­ждают устойчивость эпителия подвздошной кишки к неконтролируемому росту — значительному, генетически обусловленному контролю над этим процессом в систе­ме «крипта-ворсинка».
ЛИТЕРАТУРА:
1.    Аруин Л.И., Капуллер Л.Л., Исаков В.А. Морфологическая диагностика болезней желудка и кишечника. М.: Триада-Х; 1998: 496.
2.    Зуфаров К.А., Юлдашев А.Ю. Тонкая кишка. В кн.: Руководство по гистологии. СПб.: СпецЛит; 2; 2001: 115-40.
3.    Международная гистологическая номенклатура / Под ред. В.В. Семченко, Р.П. Самусева, М.В. Моисеева, З.Л. Колосовой. Омск: Омская медицинская академия; 1999: 15Б.
4.    Li L, Xie Т. Stem Cell Niche: Structure and Function. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2005; 21: Б05-31.
5.    Booth C, Potten C.S. Gut instincts: thoughts on intestinal epithelial stem cells. J. Clin. Invest. 2000; 105: 1493-99.
Б. Клишов А.А. Гистогенез и регенерация тканей. Л.: Медицина; 1984: 232.
7.    Деев Р.В., Ахмедов Т.Д. Реактивные изменения эпителия подвздошной кишки в составе мочевых резервуаров. Вопросы морфологии ХХ1 века. Сборник научных трудов, посвященный 100-летию кафедры медицинской биологии СПбГМА им. И.И. Мечникова. СПб.; 1; 2008: 107-14.
8.    Заварзин А.А. Сравнительная гистология. СПб.: Из-во С.-Петербургского государственного университета; 2000: 520.
9.    Merritt A., Potten С, Watson A. et al. Differential expression of bcl-2 in intestinal epithelia. J. Cell Sci. 1995; 108: 2261-71.
10.  Bjerknes M., Cheng H. Gastrointestinal stem cells. II. Intestinal stem
cells. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2005; 289(3): G381-7.
11.  Бондарева В.А., Шпонька И.С. Значение прогностических маркеров опухолевой прогрессии Ki-67 и р53 в опухолях молочной железы. Морфолопя 2007; 1(1): 40-44.
12.  Brown D.C., Gatter К.С. Monoclonal antibody Ki-67: its use in histopathology. Histopathology 1990; 17: 489-503.
13.  Костюкевич СВ. Эндокринный аппарат эпителия слизистой оболочки толстой кишки отдельных представителей позвоночных животных и человека в норме и при некоторых видах патологии. Дис. ...док. мед. наук. СПб.; 2004: 263.
14.  Scoville D.H., Sato Т., Не Х.С., Li L. Current View: Intestinal Stem Cells and Signaling. Gastroenterol. 2008; 134(3): 849-64.
1 5. Dellis A.E., Demonakou M., Papatsoris A.G. et al. Insight into long-term histological, proliferative and apoptotic modifications in ileal orthotopic neobladder and conduit mucosa. Tumori 2008; 94: 701—5.
16.Gatti Pi., Ferretti S., Bucci G. et al. Histological Adaptation of Orthotopic Ileal Neobladder Mucosa: 4-Year Follow-Up of 30 Patients. Eur. Urol. 1999; ЗБ: 588-94.
17.Дариенко P.O. Клинико-морфологическая адаптация арти-фициального мочевого пузыря. Дис. .. .кандидата мед. наук. СПб.; 2008: 168.
18. Linden М., Nathanson S., Zarbo R. Evaluation of anti-p53 antibody staining immunoreactivity in benign tumors and nonneoplastic tissue. Appl. Immunohistochem. 1995; 3: 232-8.
Поступила 23.02.2009

Unfortunetely, only registered users are allowed to leave comments.

Яндекс цитирования
Login

Password

Запомнить